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This report sets out the challenge for freshwater in a changing climate and provides policy guidance on how to navigate this new “waterscape”. It highlights the range of expected changes in the water cycle and the challenge of making practical, on-site adaptation decisions for water. It offers policymakers a risk-based approach to better “know”, “target” and “manage” water risks and proposes policy guidelines to prioritise action and improve the efficiency, timeliness and equity of adaptation responses.
The report also highlights general trends and good practices drawn from the OECD Survey of Policies on Water and Climate Change Adaptation, covering all 34 member countries and the European Commission. Individual country profiles are available, which provide a snapshot of the challenges posed by climate change for freshwater and the emerging policy responses (on-line only).
Finally, the report highlights the benefits of well-designed economic instruments (e.g. insurance schemes, water trading, water pricing), ecosystem-based approaches and ‘real options’ approaches to financing. These approaches can improve the flexibility of water policy and investment, reducing the cost of adjusting to changing conditions.
This report considers the potential of marine biotechnology to contribute to economic and social prosperity by making use of recent advances in science and technology. It discusses scientific and technological tools at the centre of a renewed interest in marine biotechnology, contributing to a new bioeconomy sector in many countries, and offering potential new solutions to global challenges. It also examines how these advances are improving our understanding of marine life and facilitating access to, and study of, marine organisms and ecosystems, and it considers the largely untapped potential of these bioresources.
This promise is considered alongside the challenges associated with the development of these resources which exist with complex ecosystems and fluidly distributed in a vast, largely shared environment. The report makes the case for a new global framework for the sustainable development of marine biotechnology and identifies some areas that will benefit from focused attention as governments develop policies to support it. In addition to this prospective view, this report identifies some early policy lessons learned by the governments which are leading attempts to benefit from bioresources.
La présente Ligne directrice porte sur le danger de corrosion cutanée pour la santé humaine faisant suite à une exposition avec un produit chimique. La corrosion cutanée désigne la survenue de lésions irréversibles de la peau qui se manifestent par une nécrose visible, selon la définition du Système Général Harmonisé pour la Classification et l’Étiquetage des produits chimiques.
Cette Ligne directrice décrit une procédure in vitro permettant d’identifier les substances et mélanges corrosifs et non corrosifs, en s’appuyant sur la méthode d’essai de résistance électrique transcutanée (RET) pratiquée sur un épiderme de rat. Le produit chimique testé est appliqué sur des disques cutanés (au nombre de trois) pendant une durée n’excédant pas 24 heures. Les substances corrosives sont identifiées par leur capacité à produire une perte de l’intégrité du stratum corneum normal et de sa fonction de barrière, qui est mesurée par la réduction du RET au-dessous d'un seuil d'avertissement (5kΩ pour le rat). Une étape de coloration incorporée à la procédure d'essai permet de déterminer si l'augmentation de la perméabilité ionique est due à la destruction physique du stratum corneum.
Cette Ligne directrice comprend également un ensemble de normes de performance pour l’évaluation de méthodes d’essai (RET) similaires ou modifiées.
The present Test Guideline addresses the human health hazard endpoint skin corrosion, following exposure to a test chemical. Skin corrosion is defined as the production of irreversible tissue damage, manifested as visible necrosis of the skin, according to the definition of the Globally Harmonised System for Classification and Labeling of Chemicals.
This Test Guideline describes an in vitro procedure allowing the identification of non-corrosive and corrosive substances and mixtures, based on three-dimensional human skin model which reliably reproduces histological, morphological, biochemical, and physiological properties of the upper layers of human skin, including a functional stratum corneum. The procedure on reconstituted human epidermis is based on the principle that corrosive chemicals are able to penetrate the stratum corneum by diffusion or erosion, and are cytotoxic to the underlying cell layers. Two tissue replicates are used for each treatment (or exposure time), and for controls. Corrosive materials are identified by their ability to produce a decrease in cell viability below defined threshold levels at specified exposure time. Cell viability is measured by enzymatic conversion of the vital dye MTT into a blue formazan salt that is quantitatively measured after extraction from tissues. Corrosive substances are evidenced by their capacity to reduce cell viability below the defined threshold.
Several validated methods are referenced in the Test Guideline and follow the procedure described above. Some of the methods referenced allow sub-categorisation among corrosive chemicals.
This Test Guideline also includes a set of Performance Standards (PS) for the assessment of similar and modified TER-based test methods.
This Test Guideline describes an in vitro procedure that may be used for the hazard identification of irritant chemicals (substances and mixtures) in accordance with the UN Globally Harmonized System of Classification and Labelling (GHS) Category 2. It is based on reconstructed human epidermis (RhE), which in its overall design closely mimics the biochemical and physiological properties of the upper parts of the human skin. Cell viability is measured by enzymatic conversion of the vital dye MTT into a blue formazan salt that is quantitatively measured after extraction from tissues. Irritant test chemicals are identified by their ability to decrease cell viability below defined threshold levels (below or equal to 50% for UN GHS Category 2). This Test Guideline also includes a set of Performance Standards for the assessment of similar and modified RhE-based test methods. There are four validated test methods that adhere to this Test Guideline. Depending on the regulatory framework and the classification system in use, this procedure may be used to determine the skin irritancy of test substances as a stand-alone replacement test for in vivo skin irritation testing, or as a partial replacement test, within a tiered testing strategy.
The present Test Guideline addresses the human health hazard endpoint skin corrosion, following exposure to a test chemical. Skin corrosion is defined as the production of irreversible tissue damage, manifested as visible necrosis of the skin, according to the definition of the Globally Harmonised System for Classification and Labeling of Chemicals.
This Test Guideline describes an in vitro procedure allowing the identification of non-corrosive and corrosive substances and mixtures, based on the rat skin transcutaneous electrical resistance (TER) test method. The test chemical is applied to three skin discs for a duration not exceeding 24 hours. Corrosive substances are identified by their ability to produce a loss of normal stratum corneum integrity and barrier function, which is measured as a reduction in the TER below a threshold level (5kΩ for rat). A dye-binding step incorporated into the test procedure enables to determine whether the increase in ionic permeability is due to physical destruction of the stratum corneum.
This Test Guideline also includes a set of Performance Standards (PS) for the assessment of similar and modified TER-based test methods.
Cette Ligne directrice décrit une procédure in vitro qui peut être utilisée pour identifier les dangers présentés par les produits chimiques irritants (substances et mélanges) conformément à la Catégorie 2 du Système général harmonisé de classification et d’étiquetage (SGH) de l’ONU. Elle s’appuie sur un épiderme humain reconstitué, qui dans sa conception globale, reproduit les propriétés biochimiques et physiologiques de la partie supérieure de la peau humaine. La viabilité cellulaire est mesurée par la conversion enzymatique du colorant vital MTT en un sel de formazan bleu, qui est mesuré quantitativement après extraction des tissus. Les produits chimiques testés irritants sont identifiés par leur capacité à réduire la viabilité cellulaire au-dessous d’un seuil défini (inférieur ou égal à 50% pour la Catégorie 2 du SGH de l’ONU). Cette Ligne directrice comprend aussi des normes de performance pour l’évaluation de méthodes d’essai similaires ou modifiées sur épiderme humain reconstitué. Quatre méthodes d’essai validées sont conformes à cette Ligne directrice. En fonction du cadre législatif et du système de classification utilisé, cette procédure peut être utilisée pour déterminer l’irritation cutanée de produits chimiques testés, en tant qu’essai de substitution d’essai d’irritation cutanée in vivo, ou en tant qu’essai de substitution partiel, dans le cadre d’une stratégie d’essai à plusieurs niveaux.
La présente Ligne directrice porte sur le danger de corrosion cutanée pour la santé humaine faisant suite à une exposition avec un produit chimique. La corrosion cutanée désigne la survenue de lésions irréversibles de la peau qui se manifestent par une nécrose visible, selon la définition du Système Général Harmonisé pour la Classification et l’Étiquetage des produits chimiques.
Cette Ligne directrice décrit une procédure in vitro permettant d’identifier les substances et mélanges corrosifs et non corrosifs, en faisant appel à un épiderme humain reconstitué qui reproduit fidèlement les propriétés histologiques, morphologiques, biochimiques et physiologiques des couches supérieures de la peau humaine. La procédure sur épiderme humain reconstitué part du principe que les substances corrosives sont capables de pénétrer dans le stratum corneum (couche cornée) par diffusion ou érosion, et sont cytotoxiques pour les cellules des couches sous-jacentes. Deux réplicats sont employés pour chaque traitement (ou durée d'exposition), et pour les contrôles. Les substances corrosives sont identifiées sur la base de leur capacité à réduire la viabilité cellulaire en dessous des valeurs seuils définies pour des périodes d'exposition spécifiques. La viabilité cellulaire est mesurée via la conversion enzymatique du colorant vital MTT en un sel de formazan bleu mesuré quantitativement après son extraction des tissus. Les substances corrosives sont mises en évidence par leur capacité à faire chuter la viabilité cellulaire sous un seuil prédéterminé.
Plusieurs méthodes validées sont référencées dans la Ligne directrice et suivent la procédure décrite ci-dessus. Certaines méthodes référencées permettent par aillaurs la sous-categorisation des produits corrosifs.
Cette Ligne directrice comprend également un ensemble de normes de performances pour l’évaluation de méthodes d’essai similaires ou modifiées.
La méthode d’essai décrite dans la présente ligne directrice permet de déterminer la toxicité aigüe ou létale des produits chimiques chez le poisson-zèbre (Danio rerio) au stade embryonnaire.
Les œufs de poisson-zèbre fraîchement fécondés sont exposés au produit chimique testé durant une période de 96 heures. Vingt embryons (un embryon par puits) sont exposés au produit chimique testé par niveau de concentration. L’essai compte cinq concentrations croissantes de produit chimique testé et un témoin. Toutes les 24 heures, quatre observations sont utilisées comme indicateurs de létalité et enregistrées : (i) la coagulation des œufs fécondés, (ii) l’absence de formation de somites, (iii) le non-détachement du bourgeon caudal dans le sac vitellin, (iv) l’absence de battements du cœur. À la fin de la période d’exposition, on détermine la toxicité aiguë ou létale (CL50) d’après le résultat positif obtenu en ce qui concerne l’une des quatre observations apicales notées, et l’on calcule la CL50. Le rapport d’étude inclut également un certain nombre d’informations relatives à la conduite de l’essai, dont la concentration d’oxygène dissous, le pH, la dureté totale, la température et la conductivité des solutions, les concentrations mesurées du produit chimique testé, et la réponse aux critères de validité de l’essai.
The test method described in this Test Guideline, is intended to define the lethal and sub-lethal effects of chemicals on the early life stages of the species tested.
The early-life stages of fish are exposed to five concentrations of the test substance dissolved in water, preferably under flow-through conditions, or where appropriate, semi-static conditions. The test starts with placing fertilised eggs (at least 80 per concentration level) in the test chambers (four at the minimum) and continues at least until all the control fishes are free-feeding. Lethal and sub-lethal effects are assessed and compared with control values to either determine the lowest observed effect concentration and the no observed effect concentration, or the effect concentration leading to x% change on organisms for the effect observed. The study report should include measurement of the concentrations of the test substance in water at regular intervals (five at least), the dissolved oxygen, the temperature, pH, total hardness and salinity, fish weight and length, observations of abnormal appearance, abnormal behaviour, hatching and survival, as well as the no-observed effect level or the effect concentration leading to x% change in the organisms for the effect observed.
This Test Guideline (TG) describes a honey bee brood acute toxicity test under laboratory conditions. The method aims at the determination of the lethal dose (72-h LD50) following single exposure of larvae to a chemical.
On day 1 (D1) of the study, first instar synchronised larvae are taken from the comb of three colonies (thirty-six larvae in total per group) and individually placed into 48 well-plates where they are fed a standardized amount of artificial diet. On day 4 (D4) of the test, a single dose of the test chemical is administered to the larvae with the diet. Each group of thirty-six larvae is administered a given dose in a range of five increasing doses. Mortalities are recorded on D5, D6, and D7 of the test. The 72-hr LD50 is calculated for larvae (cumulative mortality at D7). The study report also includes a number of important elements, in particular regarding test conditions (e.g., temperature and humidity).
The objective of OECD Test Guidelines for the pesticide residue chemistry is to assess pesticide exposure by identifying these residues in food or animal feedstuffs for purposes of dietary risk assessment and setting Maximum Residue Levels. They have been developed and are based on guidelines in use for many years in OECD countries and by the Food and Agriculture Organisation. Because of the unique nature of each study, the pesticide expected use, and the particular methods needed to elucidate the metabolic pathway for each chemical, the description of the test method cannot be as prescriptive as usually required for other OECD Test Guidelines. Pesticide residue studies are complex; guidelines cannot specify all parameters in advance, but each study must be designed individually. Given these characteristics, the guidelines in Part A of Section 5 include elements that differ from those in the other sections (1-4) of the OECD Guidelines for the Testing of Chemicals.
Cette Ligne directrice décrit six méthodes qui permettent le classement des produits chimiques en fonction de leur biodégradabilité facile en milieu aqueux aérobie. Les méthodes sont l’Essai de disparition du COD, l’Essai de dégagement de CO2 (Essai de Sturm modifié), l’Essai MITI modifié (I) (Ministry of International Trade and Industry, Japon), l’Essai en flacon fermé, l’Essai de « screening » modifié de l'OCDE et l’Essai de respirométrie manométrique.
Une solution ou une suspension de la substance d'essai dans un milieu minéral, bien déterminée/décrite, est ensemencée et incubée en aérobie dans l'obscurité ou dans la lumière diffuse. La réalisation en parallèle de témoins avec l'inoculum, mais sans substance d'essai, permet de déterminer l'activité endogène de l'inoculum. Un essai avec un composé de référence (aniline, acétate de sodium ou benzoate de sodium) est réalisé en parallèle pour contrôler la procédure. Normalement, l'essai dure 28 jours. Au moins deux flacons ou récipients contenant la substance d'essai plus l'inoculum, et au moins deux flacons ou récipients contenant l’inoculum seulement doivent être employés ; des récipients uniques suffisent pour le composé de référence. Généralement la dégradation est suivie de la détermination des paramètres tels que le COD, la production de CO2 et la consommation d'oxygène. Les niveaux de passage pour la biodégradabilité facile sont une diminution de 70% du COD et dans le cas des méthodes respirométriques une consommation de 60% de la DThO ou une production de 60% de CO2. Ces valeurs limites doivent être atteintes dans un intervalle de 10 jours au cours de la période des 28 jours de l'essai.
Note. La méthode F de l'essai 301 a été corrigée ; cette modification ne concerne que la version française.
This Test Guideline describes the procedure for the electronic determination of pH of an undiluted aqueous solution or dispersion, the pH of a dilution of a solution or dispersion in water, or the pH of a chemical diluted to end-use concentration. It also describes procedures to determine acid reserve or alkali reserve for a chemical that is acidic or alkaline with either strong or weak acid or alkali.
The pH of an aqueous solution or dispersion in water is determined with a pH-meter equipped with an appropriate electrode system. The acidity or alkalinity of a solution or dispersion in water is determined by titration with standard acid or alkali using electrometric endpoint detection.
La présente Ligne directrice décrit la méthode électrométrique de détermination du pH d’une solution ou dispersion aqueuse non diluée, d’une dilution de cette solution ou dispersion dans l’eau, ou d’un produit chimique dilué pour une utilisation finale. Elle détaille également les procédures à suivre pour établir le pouvoir tampon d’un produit chimique acide ou basique, à l’aide d’une base ou d’un acide fort ou faible.
Le pH d’une solution ou dispersion aqueuse est déterminé à l’aide d’un pH-mètre équipé d’un système d’électrode approprié. L’acidité ou l’alcalinité d’une solution ou dispersion dans l’eau est établie par titrage avec une base ou un acide standard, avec détermination du pH par la méthode électrométrique.
Les Lignes directrices de l'OCDE pour les essais concernant la chimie des résidus de pesticides ont pour objectif d'évaluer l'exposition aux pesticides en identifiant leurs résidus dans les aliments pour l'homme ou les produits alimentaires destinés aux animaux, afin d'estimer les risques alimentaires et de fixer des limites maximales de résidus. Elles ont été mises au point à partir de lignes directrices utilisées depuis de nombreuses années dans les pays de l'OCDE et par l'organisation des Nations Unies pour l'alimentation et l'agriculture. La nature particulière de chaque étude, l'utilisation escomptée du pesticide, et les méthodes particulières nécessaires pour élucider la voie métabolique de chaque produit chimique interdisent de donner une description de la méthode d'essai aussi prescriptive qu'il est généralement exigé des autres Lignes directrices de l'OCDE pour les essais. Les études de résidus de pesticides sont complexes; il est impossible de spécifier par anticipation tous les paramètres dans les Lignes directrices, et chaque étude doit être élaborée individuellement. De ce fait, les Lignes directrices de la partie A de la section 5 comprennent des éléments qui diffèrent de ceux des autres sections (1-4) des Lignes directrices de l'OCDE pour les essais de produits chimiques.
La présente Ligne directrice (LD) décrit un essai de toxicité aiguë sur un couvain d’abeilles dans des conditions de laboratoire. La méthode vise à déterminer la dose létale (DL50 à 72h) à la suite d'une exposition unique des larves à un produit chimique.
Le premier jour de l'étude (J1), douze larves synchronisées au premier stade larvaire sont retirées du cadre de trois colonies (trente-six larves au total par groupe) et placées individuellement dans des puits d’une plaque à 48 puits où elles reçoivent une quantité normalisée de nourriture artificielle. Le quatrième jour de l'essai (J4), une dose unique du produit chimique testé est ajoutée à la nourriture des larves. Chaque groupe de trente-six larves reçoit une dose distincte dans une série de cinq doses croissantes. Les mortalités sont enregistrées aux jours J5, J6 et J7 de l’essai. La DL50 à 72 h est calculée pour les larves (mortalité cumulée à J7). Le rapport d’étude comprend un certain nombre d’autres informations importantes, notamment concernant les conditions de l’essai (p.ex. la température et l’humidité).
The test method described in this Test Guidelineis inteneded to determine the acute or letal toxicity of chemicals on embryonic stages of fish (Danio rerio).
Newly fertilised zebrafish eggs are exposed to the test chemical for a period of 96 hrs. Every 24 hrs. Twenty embryos (one embryo per well) are exposed to the chemical tested at each concentration level. The test includes five increasing concentrations of the chemical tested and a control. Every 24 hours, four apical observations are recorded as indicators of lethality: (i) coagulation of fertilised eggs, (ii) lack of somite formation, (iii) lack of detachment of the tail-bud from the yolk sac, and (iv) lack of heartbeat. At the end of the exposure period, acute toxicity is determined based on a positive outcome in any of the four apical observations recorded, and the LC50 is calculated. The test report also includes a number of other important information elements related to the conduct of the test, in particular: the concentration of dissolved oxygen, pH, total hardness, temperature et conductivity of solutions, measured concentrations of the chemical tested, and whether the validity criteria of the test were met.
La méthode d'essai décrite dans cette Ligne directrice, est prévue pour définir les effets létaux et sublétaux des produits chimiques sur les premiers stades de vie des espèces examinés.
Les premiers stades de vie des poissons sont exposés à cinq concentrations de la substance d'essai dissoute dans l'eau, de préférence dans des conditions de renouvellement continu du milieu, ou s'il y a lieu, dans des conditions semi-statiques. L'essai commence en plaçant les oeufs fécondés (au moins 80 par niveau de concentration) dans les chambres d'essai (quatre au mimimum), et continue au moins jusqu'à ce que tous les poissons témoins s’alimentent de façon autonome. Les effets létaux et sublétaux sont évalués et comparés aux valeurs témoin, soit pour déterminer la concentration la plus basse pour laquelle on observe un effet, et la concentration sans effet observé, soit pour déterminer la concentration qui engendre un effet de x% sur les poissons selon l’effet mesuré. Le rapport d'étude inclut la mesure des concentrations de la substance d'essai dans l'eau à intervalles réguliers (cinq au moins), de l'oxygène dissous, de la température, du pH, la dureté et la salinité totale, du poids et de la longueur des poissons, les observations d'apparence anormale, de comportement anormal, de l’éclosion et de la survie, ainsi que la concentration sans effet observé ou la concentration qui engendre un effet de x% sur les poissons.