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In der Studie werden die grundlegenden Fragen angesprochen, die für die Kernenergiedebatte heute von Bedeutung sind. Es werden wissenschaftliche und technologische Grundlagen ausgearbeitet sowie Fakten und offene Fragen im Zusammenhang mit der Behandlung radioaktiver Abfälle, der kerntechnischen Sicherheit, dem Strahlenschutz, der Wirtschaftlichkeit sowie dem internationalen Atomrecht und der Nichtverbreitung von Kernwaffen behandelt. Es wird die Kernenergie im Kontext der nachhaltigen Entwicklung betrachtet und auch auf das Potenzial neuer Kernenergie-Technologien eingegangen.

Cette Ligne directrice correspond à une méthode in vitro d'essai sur membrane d’étanchéité qui peut être employée pour identifier les substances corrosives.

La méthode d'essai utilise une membrane artificielle conçue pour répondre aux substances corrosives de manière semblable à la peau animale in situ. La méthode in vitro d'essai de barrière de membrane peut être employée avec des substances solides, liquides (les substances aqueuses avec un pH dans la gamme de 4.5 à 8.5 ne sont souvent pas qualifiées pour l'essai) et des émulsions. L'essai décrit dans cette Ligne directrice permet l'identification des substances chimiques et des mélanges corrosifs, et permet de classer en sous-catégorie des substances corrosives comme autorisé dans le GHS. Cette classification est basée sur le temps de pénétration de substance à travers la membrane. Le système d'essai se compose de deux composants, une membrane biologique macromoléculaire synthétique et un système de détection chimique (lequel détecte la substance d'essai). Un nombre approprié de répliques est préparé pour chaque substance d'essai et ses contrôles correspondants. Les temps d'application de la substance d'essai sur la barrière membranaire sont enregistrés et échelonnés. La durée écoulée (en minutes) entre l'application de la substance d'essai sur la membrane d’étanchéité et la pénétration de la membrane est employée pour prévoir la corrosivité de la substance d'essai.

This Test Guideline is for an in vitro membrane barrier test method that can be used to identify corrosive substances.

The test method utilizes an artificial membrane designed to respond to corrosive substances in a manner similar to animal skin in situ. The in vitro membrane barrier test method may be used to test solids, liquids (aqueous substances with a pH in the range of 4.5 to 8.5 often do not qualify for testing) and emulsions. The test described in this Test Guideline allows the identification of corrosive chemical substances and mixtures and allows the subcategorisation of corrosive substances as permitted in the GHS. This classification is based on the substance penetration time through the membrane barrier. The test system is composed of two components, a synthetic macromolecular bio-barrier and a Chemical Detection System (which one detect the test substance). An appropriate number of replicates is prepared for each test substance and its corresponding controls. The times of applying the test substance to the membrane barrier are recorded and staggered. The time (in minutes) elapsed between application of the test substance to the membrane barrier and barrier penetration is used to predict the corrosivity of the test substance.

Cette Ligne directrice est conçue pour évaluer des effets, sur l'émergence de plantules et le début de croissance des plantes supérieures, après exposition à la substance d'essai appliquée à la surface du sol ou dans le sol.

Des semences sont placées en contact avec le sol traité par la substance d'essai. Les effets sont évalués au bout de 14 à 21 jours après émergence de 50 % des plantules dans le groupe témoin. Les effets observés sont l’évaluation visuelle de l’émergence des plantules, les mesures de biomasse, la hauteur des pousses et les effets nocifs visibles sur différentes parties de la plante. Selon le but de l'étude, l'essai peut être effectué afin de déterminer la courbe dose-réponse, ou, à un(e) taux/concentration unique, comme essai limite. Une analyse statistique appropriée permet de calculer une concentration efficace (CEx) ou le taux d'application efficace (TEx) pour les paramètres d'intérêt les plus sensibles. En outre, la concentration sans effet observé (CSEO) et la concentration minimale avec effet observé (CMEO) peuvent être calculées dans ce test.

Cette méthode d’essai est conçue pour évaluer des effets sur la vigueur végétative des plantes terrestres suite à l'exposition aérienne à des produits chimiques généraux ainsi qu’à des biocides et des produits de protection des cultures.

L'essai peut être effectué pour déterminer la courbe dose-réponse, ou, à un(e) taux/concentration unique, comme un essai limite (un essai de détermination de l'ordre de grandeur est effectué selon les résultats) selon le but de l'étude. Les plantes sont habituellement cultivées après semis jusqu'au stade de 2 à 4 feuilles vraies. La substance d'essai est alors pulvérisée sur la plante et les surfaces foliaires à un ou plusieurs taux appropriés. Après l'application, les plantes sont comparées aux plantes témoins non traitées afin de déterminer les effets sur la vigueur et la croissance, à divers intervalles de temps compris dans les 21 à 28 jours suivant le traitement. Cette étude inclut la mesure de la biomasse des plantes survivantes (poids sec ou frais des pousses, hauteur des pousses), les effets néfastes évidents sur différentes parties de la plante, la phytoxicité visuelle et l’enregistrement de la mortalité (quotidiennement durant l’étude). Des analyses statistiques appropriées permettront de calculer une concentration efficace CEx ou un taux d'application efficace TEx, pour le paramètre ou les paramètres pertinents les plus sensibles. Cet essai peut également fournir les valeurs calculées de concentration sans effet observé (CSEO) et de concentration minimale avec effet observé (CMEO).

This Test Guideline is designed to assess effects on vegetative vigour of terrestrial plants following above-ground exposure by general chemicals, biocides and crop protection products.

The test can be conducted in order to determine the dose-response curve, or at a single concentration/rate as a limit test (range finding test is carried out depending on the results) according to the aim of the study. Plants are grown from seed usually to the 2- to 4- true leaf stage. Test substance is then sprayed on the plant and leaf surfaces at appropriate rate(s). After the application, the plants are evaluated against untreated control plants for effects on vigour and growth at various time intervals through 21 - 28 days from treatment. This study includes measurement of biomass of surviving plants (dry or fresh shoot weight, shoot height), visible detrimental effects on different parts of the plant, visual phytotoxicity and mortality (daily during the study) Appropriate statistical analysis are used to obtain an effective concentration ECx or an effective application rate ERx for the most sensitive parameter(s) of interest. Also, the no observed effect concentration (NOEC) and lowest observed effect concentration (LOEC) can be calculated in this test.

This Test Guideline is designed to assess effects on seedling emergence and early growth of higher plants following exposure to the test substance applied to the soil surface or into the soil.

Seeds are placed in contact with soil treated with the test substance and evaluated for effects following usually 14 to 21 days after 50 % emergence of the seedlings in the control group. Endpoints measured are visual assessment of seedling emergence, biomass measurements, shoot height, and the visible detrimental effects on different parts of the plant. The test can be conducted in order to determine the dose-response curve, or at a single concentration/rate as a limit test, according to the aim of the study. An appropriate statistical analysis is used to obtain effective concentration ECx or effective application rate ERx for the most sensitive parameter(s) of interest. Also, the no observed effect concentration (NOEC) and lowest observed effect concentration (LOEC) can be calculated in this test.

This Test Guideline is a screening method for the evaluation of ready biodegradability of chemical.

The test substance, normally at 20 mg C/L, as the sole source of carbon and energy, is incubated (during 28 days normally) in sealed bottles with aerobic condition containing a buffer-mineral salts medium, which has been inoculated with a mixed population of micro-organisms. In order to check the test procedure, a reference substance (aniline, sodium benzoate or ethylene glycol and 1-octanol) of known biodegradability should be tested in parallel. It is recommended that triplicate bottles be analysed after a sufficient number of time intervals. Also at least five test bottles (from test vessels, blank controls, and vessels with the reference substance) are analysed at the end of the test, to enable 95% confidence intervals to be calculated for the mean percentage biodegradation value. The CO2 evolution resulting from the ultimate aerobic biodegradation of the test substance is determined by measuring the Inorganic Carbon (IC) produced in the test bottles in excess of that produced in blank vessels containing inoculated medium only. The extent of biodegradation is expressed as a percentage of the theoretical maximum IC production (ThIC), based on the quantity of test substance added initially. Biodegradation >60% ThIC within the 10-d window in this test demonstrates that the test substance is readily biodegradable under aerobic conditions.

Cette Ligne directrice est une méthode de dépistage pour l'évaluation de la biodégradabilité facile de substance chimique.

La substance d'essai, normalement à 20 mg C/L, représentant la seule source de carbone et d’énergie, est incubée (pendant 28 jours normalement) dans des bouteilles scellées, en aérobiose, contenant un milieu tampon composé de sels minéraux, dans lequel a été ensemencée une population mixte de micro-organismes. Afin de vérifier la procédure d'essais, une substance de référence (éthylèneglycol, benzoate de sodium ou aniline et 1-octanol), à la biodégradabilité connue, doit être testée en parallèle. On recommande d’analyser trois réplicats de flacon après un nombre suffisant d'intervalles de temps. De même, au moins cinq flacons (les flacons d'essai, les flacons témoins blanc, et les flacons avec la substance de référence) sont analysés à la fin de l'essai, afin de calculer les intervalles de confiance à 95% pour le pourcentage moyen de biodégradation. L'évolution de CO2 dégagé par la biodégradation aérobie finale de la substance d'essai est déterminée en mesurant l’excèdent de carbone inorganique (CI) produit dans les flacons d'essai par rapport à celui produit dans les flacons témoins blanc ne contenant que le milieu ensemencé. Le degré de biodégradation est exprimé en pourcentage de la production maximale théorique de CI (ThCI), basé sur la quantité de substance d'essai ajoutée au départ. Une biodégradation >60% de la ThCI, dans l’intervalle de 10 jours au cours de cet essai, démontre que la substance d'essai est facilement biodégradable en aérobiose.

Cette méthode d’essai est conçue pour évaluer la toxicité de substances sur des plantes dulcicoles du genre Lemna (lentille d’eau).

Des monocultures du genre Lemna (Lemna gibba et Lemna minor habituellement), en phase de croissance exponentielle, sont exposées à au moins cinq concentrations de la substance d'essai sur une période de sept jours. L'objectif de l'essai est de quantifier les effets de la substance sur la multiplication végétative des lentilles d'eau durant cette période, à partir de l’évaluation de plusieurs paramètres. L'essai limite correspond à un niveau de dose de 100 mg/l. Cette étude inclut la mesure du pH, de l'intensité lumineuse, des concentrations de la substance d'essai, le comptage du nombre de thalles et la mesure d'un autre paramètre au moins (superficie totale des thalles, poids sec ou poids frais). La concentration entraînant un pourcentage donné d'inhibition du taux de croissance (ou du rendement) est déterminée en fonction des taux de croissance spécifiques moyens (ou du rendement) relevés dans une série de solutions expérimentales et exprimée sous la forme CxEt (ou CxEr). Un autre effet mesuré est le rendement. En outre, la concentration minimale avec effet observé (CMEO) et la concentration sans effet observé (CSEO) peuvent être déterminées par un calcul statistique.

This Test Guideline describes eight methods to measure the vapour pressure. Each one can be applied in different vapour pressure ranges. The vapour pressure (in Pascal) of a substance is defined as the saturation pressure above a solid or liquid substance and is determined at various temperatures (in Kelvin).

The methods used are: the dynamic method (Cottrell’s method), the static method, the isoteniscope Method, the effusion method: vapour pressure balance, the effusion method: Knudsen cell, the effusion method: isothermal thermogravimetry, the gas saturation method and the spinning rotor method. The vapour pressure from any of the preceding methods should be determined for at least two temperatures. Three or more are preferred in the range 0 to 50°C, in order to check the linearity of the vapour pressure curve. In case of Effusion methods and Gas saturation method, 120 to 150 °C is recommended for the measuring temperature range instead of 0 to 50°C.

This Test Guideline describes a screening method for the evaluation of potential anaerobic biodegradability of organic chemicals under specific conditions.

Washed digested sludge, containing low (<10 mg/L) concentrations of inorganic carbon (IC), is diluted about ten-fold to a total solids concentration of 1 g/L to 3 g/L and incubated at 35 °C ±2°C in sealed vessels with the test substance at 20 to 100 mg C/L for up to 60 days. The activity of the sludge is measured by running parallel blank controls. To check the procedure a reference substance (phenol, sodium benzoate, polyethylene glycol 400) is tested in parallel. At least triplicate test vessels for the test substance, blank controls, reference substance, inhibition controls and pressure control chambers are prepared. The increase in headspace pressure in the vessels resulting from the production of carbon dioxide and methane is measured. The inorganic carbon is measured at the end of the test. The amount of carbon (inorganic plus methane) resulting from the biodegradation of the test substance, is calculated from the net gas production and net IC formation in the liquid phase, in excess of blank control values. The extent of biodegradation is calculated from total IC and methane-C produced as a percentage of the measured or calculated amount of carbon added as test substance.

Cette Ligne directrice décrit huit méthodes pour mesurer la pression de vapeur. Chacune peut être appliquée dans différentes gammes de pression de vapeur. La pression de vapeur (en Pascal) d’une substance est définie comme la pression de saturation au-dessus d'une substance solide ou liquide et est déterminée à différentes températures (en Kelvin).

Les méthodes employées sont : la méthode dynamique (la méthode de Cottrell), la méthode statique, la méthode de l’isoténiscope, la méthode d'effusion : balance de pression de vapeur, la méthode d'effusion : cellule de Knudsen, la méthode d'effusion: thermogravimétrie isothermique, la méthode par saturation de gaz et la méthode de la jauge à rotor. Quelle que soit la méthode choisie, la pression de vapeur doit être déterminée à au moins deux températures. Dans le domaine compris entre 0 et 50° C, il est préférable d'effectuer des mesures à au moins trois températures, en vue de vérifier la linéarité de la courbe de pression de vapeur. Dans le cas des méthodes d'effusion et de la méthode par saturation de gaz, il est recommandé un intervalle de températures des mesures comprises entre 120 et 150 °C au lieu de 0 à 50° C.

Cette Ligne directrice décrit une méthode d’essai de dépistage destinée à évaluer la biodégradabilité anaérobie potentielle des produits chimiques organiques dans des conditions spécifiques.

Une boue digérée et lavée, à faible concentration (

This Test Guideline is designed to assess the toxicity of substances to freshwater aquatic plants of the genus Lemna (duckweed).

Exponentially growing plant cultures of the genus Lemna (Lemna gibba and Lemna minor usually) are allowed to grow as monocultures in, at least, five concentrations of the test substance over a period of seven days. The objective of the test is to quantify substance-related effects on vegetative growth over this period based on assessments of selected measurement variables. The limit test corresponds to one dose level of 100 mg/L. This study includes measurement of pH, light intensity, concentrations of the test substance, the counting of the frond number and measurement of at least one other variable (total frond area, dry weight or fresh weight). From the average specific growth rates (or yield) recorded in a series of test solutions, the concentration bringing about a specified x % inhibition of growth rate (or yield) is determined and expressed as the ErCx (or EyCx). An additional response variable used is yield. In addition, the lowest observed effect concentration (LOEC) and the no observed effect concentration (NOEC) may be statistically determined.