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Thema dieses Berichts sind die Herausforderungen für das urbane Wassermanagement im OECD-Raum. Untersucht werden Maßnahmen auf nationaler und kommunaler Ebene in Bezug auf Wasserrisiken, die städtische Infrastruktur und Dynamik sowie Institutionen und Governance-Regelungen. Die Analyse richtet den Blick auf vier miteinander verknüpfte Bereiche – Finanzierung, Innovation, Kooperation mit ländlichen Gemeinden im Umland und Governance – und schlägt eine lösungsorientierte Typologie auf der Grundlage bestimmter städtischer Merkmale vor. Dabei wird insbesondere festgestellt, dass ein nachhaltiges Wassermanagement das Zusammenwirken verschiedener staatlicher Ebenen voraussetzt, die mit lokalen Initiativen und Akteuren zusammenarbeiten.
Australia’s agriculture and food industries are well placed to contribute to the economy’s future growth given the robust prospects of global food demand and the continuing high international competitiveness of these sectors. There are, however, important challenges that call for new ways to exploit agricultural resources and human capital. The decade-long decline in agricultural productivity growth needs to be overcome, coupled with the need to accommodate uncertainties about the impacts of climate change and to respond to societal demands in the areas of sustainable development and animal welfare. The agro-food sector also needs to absorb exchange-rate and cost pressures created by the mining boom. To tap additional opportunities of the higher value food segments, Australian agri-businesses need new knowledge and capabilities to seize demand signals and value opportunities, particularly from more affluent consumers in Asian markets.
The Canadian food and agriculture sector is for the most part competitive and export-oriented: although challenges and opportunities vary significantly between regions, primary agriculture benefits from an abundance of natural resources and faces limited environmental constraints. Negative environmental impacts of agriculture relate mainly to local water pollution by agricultural nutrients. Productivity growth, resulting from innovation and structural change, has driven production and income growth without significantly increasing pressure on resource use. Nonetheless, the capacity to innovate is crucial to take advantage of the growing and changing demand for food and agricultural products at the global level.
The in vitro mammalian cell gene mutation test can be used to detect gene mutations induced by chemical substances. In this test, the used genetic endpoints measure mutation at hypoxanthine-guanine phosphoribosyl transferase (HPRT), and at a transgene of xanthineguanine phosphoribosyl transferase (XPRT). The HPRT and XPRT mutation tests detect different spectra of genetic events.
Cells in suspension or monolayer culture are exposed to, at least four analysable concentrations of the test substance, both with and without metabolic activation, for a suitable period of time. They are subcultured to determine cytotoxicity and to allow phenotypic expression prior to mutant selection. Cytotoxicity is usually determined by measuring the relative cloning efficiency (survival) or relative total growth of the cultures after the treatment period. The treated cultures are maintained in growth medium for a sufficient period of time, characteristic of each selected locus and cell type, to allow near-optimal phenotypic expression of induced mutations. Mutant frequency is determined by seeding known numbers of cells in medium containing the selective agent to detect mutant cells, and in medium without selective agent to determine the cloning efficiency (viability). After a suitable incubation time, colonies are counted.
L'essai in vitro de mutation génique sur des cellules de mammifères peut être employé pour détecter des mutations induites par les substances chimiques. Dans cet essai, les systèmes genetiques utilisés permettent de détecter une mutation sur les loci de l’hypoxanthine-guanine phosphoribosyl transferase (HPRT) et d’un transgène de la xanthine-guanine phosphoribosyl transferase (XPRT). Les essais de la mutation de HPRT et de XPRT détectent différents types d’événements génétiques.
Des cellules en suspension ou en culture monocouche sont exposées à quatre concentrations analysables de la substance d'essai au moins, avec et sans activation métabolique, pendant une période appropriée. Elles sont repiquées pour déterminer la cytotoxicité et pour permettre l'expression phénotypique avant la sélection. La cytotoxicité est habituellement déterminée en mesurant l'efficacité de clonage relative (survie) ou la croissance totale relative des cultures après la période de traitement. Les cultures traitées sont maintenues dans le milieu de croissance pendant une période suffisante, caractéristique de chaque locus et de chaque type cellulaire, afin de permettre l'expression phénotypique presque optimale des mutations induites. La fréquence de mutant est déterminée par l’ensemencement d’un nombre connu de cellules dans le milieu contenant l'agent sélectif pour détecter des cellules mutantes, et dans le milieu sans agent sélectif pour déterminer l'efficacité de clonage (viabilité). Après un temps approprié d'incubation, des colonies sont comptées.
L'essai in vitro de mutation génique sur des cellules de mammifères peut être employé pour détecter des mutations induites par les substances chimiques. Cette Ligne directrice comprend deux essais de mutation génique, avec deux lignées cellulaires spécifiques tk hétérozygotes : les cellules L5178Y tk+/-3.7.2C pour le test du lymphome de souris (mouse lymphoma essai) (MLA), et les cellules TK6 tk+/- pour l’essai TK6. Les types d’événements génétiques détectés en utilisant le locus tk comprennent soit les mutations géniques que les changements chromosomiques.
Des cellules en suspension ou en culture monocouche sont exposées à quatre concentrations analysables de la substance d'essai au moins, avec et sans activation métabolique, pendant une période appropriée. Elles sont repiquées pour déterminer la cytotoxicité et pour permettre l'expression phénotypique avant la sélection. La cytotoxicité est habituellement déterminée en mesurant l'efficacité de clonage relative (survie) ou la croissance totale relative des cultures après la période de traitement. Les cultures traitées sont maintenues dans le milieu de croissance pendant une période suffisante, caractéristique de chaque locus et de chaque type cellulaire, afin de permettre l'expression phénotypique presque optimale des mutations induites. La fréquence de mutant est déterminée par l’ensemencement d’un nombre connu de cellules dans le milieu contenant l'agent sélectif pour détecter des cellules mutantes, et dans le milieu sans agent sélectif pour déterminer l'efficacité de clonage (viabilité). Après un temps approprié d'incubation, des colonies sont comptées.
La présente Ligne directrice pour les essais axée sur la performance (LDAP) décrit la méthodologie des essais in vitro de transactivation par transfection stable visant la détection des substances agonistes et antagonistes des récepteurs des œstrogènes (essais de TA ER). Elle comprend des méthodes d’essai structurellement et fonctionnellement similaires pour détecter les substances agonistes et antagonistes des récepteurs des œstrogènes, et devrait faciliter le développement de nouvelles méthodes similaires ou modifiées. La base de la présente LDAP est constituée de deux méthodes d’essai de référence de TA ER. Ces deux méthodes sont les suivantes: essai de TA par transfection stable (essai STTA) faisant appel à la lignée cellulaire hERα-HeLa-9903, dérivée d’une tumeur de col utérin d’origine humaine, et l’essai de TA ER BG1Luc faisant appel à la lignée cellulaire BG-1Luc-4E2, dérivée d’adénocarcinome ovarien d’origine humaine. Les lignées cellulaires utilisées dans ces essais expriment les récepteurs des œstrogènes et ont été transfectées de façon stable avec un gène rapporteur de la luciférase répondant aux ER. Ces essais servent à détecter les substances chimiques qui peuvent activer (activité agoniste) et aussi inhiber (activité antagoniste) la transcription régulée par les ER. Les ER sont activés après liaison du ligand au récepteur Le complexe récepteur-ligand se fixe ensuite à certains éléments de réponse de l’ADN et transactive ainsi le gène rapporteur, induisant une augmentation de l’expression cellulaire d’une enzyme marqueur (par exemple la luciférase dans les sytèmes faisant appel à la luciférase). L’enzyme transforme ensuite son substrat en produit bioluminescent mesurable quantitativement à l’aide d’un luminomètre. Les présentes méthodes sont proposées à des fins de dépistage et de priorisation, mais elles peuvent aussi livrer des informations sur les mécanismes d’action pouvant être utilisées dans le cadre d’une approche fondée sur le poids de la preuve.
L’essai de mutation létale dominante a pour but de détecter si certaines substances chimiques engendrent des mutations résultant d’aberrations chromosomiques dans les cellules germinales. En outre, l’essai de mutation létale dominante se prête bien à l’évaluation de la génotoxicité, car, malgré des variations entre les espèces, les facteurs du métabolisme in vivo, la pharmacocinétique et les processus de réparation de l’ADN sont actifs et contribuent aux réponses. L’apparition d’une mutation létale dominante à la suite d’une exposition à un produit chimique d’essai indique que cette substance a affecté le tissu germinal de l’animal étudié.
La LD 478 initiale a été adoptée en 1984. La présente version modifiée de cette ligne directrice reflète plus de trente années d’expérience de cet essai et tient compte des possibilités de l’intégrer ou de le combiner à d’autres essais de toxicité, notamment pour le développement, la reproduction ou encore des essais de génotoxicité; cependant, étant donné les limitations de l’essai et le grand nombre d’animaux utilisés, cet essai n’a pas vocation à être utilisé en première intention, mais plutôt comme méthode d’essai supplémentaire quand il n’existe pas d’alternative pour satisfaire les exigences réglementaire.
Cet essai mesure les aberrations chromosomiques structurales (de type chromosomique et chromatidique) qui surviennent dans les spermatogonies et devrait par conséquent permettre de prévoir l'induction de mutations héritées dans les cellules germinales. L’essai d’aberration chromosomique pratiqué in vivo sur des spermatogonies de mammifères est destiné à détecter les produits chimiques qui causent des aberrations chromosomiques structurales dans les cellules de spermatogonies de mammifère (1) (2) (3). Par ailleurs, cet essai se prête bien à l’évaluation de la génotoxicité, car, malgré des variations entre les espèces, les facteurs du métabolisme in vivo, la pharmacocinétique et les processus de réparation de l’ADN sont actifs et contribuent aux réponses.
La Ligne directrice 483 originale a été adoptée en 1997. La présente version modifiée de la ligne directrice reflète les connaissances scientifiques acquises après de nombreuses années d’expérience de cet essai et tient compte des possibilités de l’intégrer ou de le combiner à d’autres études de toxicité ou de génotoxicité.
La présente Ligne directrice porte sur le danger de corrosion cutanée pour la santé humaine faisant suite à une exposition avec un produit chimique. La corrosion cutanée désigne la survenue de lésions irréversibles de la peau qui se manifestent par une nécrose visible, selon la définition du Système Général Harmonisé pour la Classification et l’Étiquetage des produits chimiques.
Cette Ligne directrice décrit une procédure in vitro permettant d’identifier les substances et mélanges corrosifs et non corrosifs, en faisant appel à un épiderme humain reconstitué qui reproduit fidèlement les propriétés histologiques, morphologiques, biochimiques et physiologiques des couches supérieures de la peau humaine. La procédure sur épiderme humain reconstitué part du principe que les substances corrosives sont capables de pénétrer dans le stratum corneum (couche cornée) par diffusion ou érosion, et sont cytotoxiques pour les cellules des couches sous-jacentes. Deux réplicats sont employés pour chaque traitement (ou durée d'exposition), et pour les contrôles. Les substances corrosives sont identifiées sur la base de leur capacité à réduire la viabilité cellulaire en dessous des valeurs seuils définies pour des périodes d'exposition spécifiques. La viabilité cellulaire est mesurée via la conversion enzymatique du colorant vital MTT en un sel de formazan bleu mesuré quantitativement après son extraction des tissus. Les substances corrosives sont mises en évidence par leur capacité à faire chuter la viabilité cellulaire sous un seuil prédéterminé.
Les produits chimiques colorés et ceux qui interfèrent avec le MTT peuvent également être testés par procédure HPLC.
Plusieurs méthodes validées sont référencées dans la Ligne directrice et suivent la procédure décrite ci-dessus. Certaines méthodes référencées permettent par ailleurs la sous-catégorisation des produits corrosifs.
The test described in this Test Guideline allows the identification of corrosive chemical substances and mixtures and it enables the identification of non-corrosive substances and mixtures when supported by a weight of evidence determination using other existing information. The test protocol may also provide an indication of the distinction between severe and less severe skin corrosives. This Test Guideline does not require the use of live animals or animal tissue for the assessment of skin corrosivity.
The test material (solid or liquid) is applied uniformly and topically to a three-dimensional human skin model, comprising at least a reconstructed epidermis with a functional stratum corneum. Two tissue replicates are used for each treatment (exposure time), and for controls. Corrosive materials are identified by their ability to produce a decrease in cell viability below defined threshold levels at specified exposure periods. Coloured chemicals can also be tested by used of an HPLC procedure. The principle of the human skin model assay is based on the hypothesis that corrosive chemicals are able to penetrate the stratum corneum by diffusion or erosion, and are cytotoxic to the underlying cell layers.
La présente ligne directrice décrit les effets d'un produit chimique d’essai sur le fonctionnement de la reproduction chez le mâle et la femelle. Elle a été mise à jour par l'ajout de paramètres relatifs à la détection des perturbateurs endocriniens, en particulier la mesure de la distance ano-génitale et l’examen de la persistance du mamelon chez les petits, ainsi qu'un examen thyroïdien.
La substance d’essai est administrée en doses graduées à plusieurs groupes de mâles et de femelles. Les mâles doivent être traités pendant un minimum de quatre semaines. Les femelles doivent être traitées tout au long de l’étude, soit approximativement 63 jours. Normalement des accouplements « un mâle pour une femelle » doivent être employés dans cette étude. Cette Ligne directrice utilise le rat. Il est recommandé que chaque groupe commence avec au moins dix animaux de chaque sexe. Généralement, au moins trois groupes d’essai et un groupe contrôle doivent être utilisés. Des niveaux de dose peuvent être basés sur l'information des essais de toxicité aiguë ou sur des résultats d’études à doses répétées. La substance d'essai est administrée oralement et quotidiennement. Les résultats de cette étude incluent des observations cliniques, la mesure du poids corporel et la consommation de nourriture/eau, la surveillance du cycle oestral, la mesure/observation des caractéristiques de la descendance, la mesure du taux sérique d'hormones thyroïdiennes, de même qu’une autopsie générale et l'histopathologie. Les résultats de cette étude de toxicité devraient être évalués en termes d'effets observés, autopsie et résultats microscopiques. En raison de la période courte du traitement du mâle, l'histopathologie du testicule et l'épididyme doivent être pris en compte avec les données de fertilité, lors de l’évaluation des effets reproducteurs mâles.
This screening Test Guideline describes the effects of a test chemical on male and female reproductive performance. It has been updated with endocrine disruptor endpoints, in particular measure of anogenital distance and male nipple retention in pups and thyroid examination.
The test substance is administered in graduated doses to several groups of males and females. Males should be dosed for a minimum of four weeks. Females should be dosed throughout the study, so approximately 63 days. Matings "one male to one female" should normally be used in this study. This Test Guideline is designed for use with the rat. It is recommended that each group be started with at least 10 animals of each sex. Generally, at least three test groups and a control group should be used. Dose levels may be based on information from acute toxicity tests or on results from repeated dose studies. The test substance is administered orally and daily. The results of this study include clinical observations, body weight and food/water consumption, oestrous cycle monitoring, offspring parameters observation/measurement, thyroid hormone measurement, as well as gross necropsy and histopathology. The findings of this toxicity study should be evaluated in terms of the observed effects, necropsy and microscopic findings. Because of the short period of treatment of the male, the histopathology of the testis and epididymus should be considered along with the fertility data, when assessing male reproductive effects.
This screening Test Guideline describes the effects of a test chemical on male and female reproductive performance. It has been updated with endocrine disruptor endpoints, in particular measure of anogenital distance and male nipple retention in pups and thyroid examination.
The test substance is administered in graduated doses to several groups of males and females. Males should be dosed for a minimum of four weeks. Females should be dosed throughout the study, so approximately 63 days. Matings "one male to one female" should normally be used in this study. This Test Guideline is designed for use with the rat. It is recommended that each group be started with at least 10 animals of each sex. Generally, at least three test groups and a control group should be used. Dose levels may be based on information from acute toxicity tests or on results from repeated dose studies. The test substance is administered orally and daily. The results of this study include clinical observations, body weight and food/water consumption, oestrous cycle monitoring, offspring parameters observation/measurement, thyroid hormone measurement, as well as gross necropsy and histopathology. The findings of this toxicity study should be evaluated in terms of the observed effects, necropsy and microscopic findings. Because of the short period of treatment of the male, the histopathology of the testis and epididymus should be considered along with the fertility data, when assessing male reproductive effects.
The purpose of the Dominant lethal (DL) test is to investigate whether chemical agents produce mutations resulting from chromosomal aberrations in germ cells. In addition, the dominant lethal test is relevant to assessing genotoxicity because, although they may vary among species, factors of in vivo metabolism, pharmacokinetics and DNA-repair processes are active and contribute to the response. Induction of a DL mutation after exposure to a test chemical indicates that the chemical has affected germinal tissue of the test animal.
This modified version of the Test Guideline reflects more than thirty years of experience with this test and the potential for integrating or combining this test with other toxicity tests such as developmental, reproductive toxicity, or genotoxicity studies; however due to its limitations and the use of a large number of animals this assay is not intended for use as a primary method, but rather as a supplemental test method which can only be used when there is no alternative for regulatory requirements.
This Performance-Based Test Guideline (PBTG) describes in vitro assays, which provide the methodology of Stably Transfected Transactivation to detect Estrogen Receptor Agonists and Antagonists (ER TA assays). It comprises mechanistically and functionally similar test methods for the identification of estrogen receptor agonists and antagonists and should facilitate the development of new similar or modified test methods. The two reference test methods that provide the basis for this PBTG are: the Stably Transfected TA (STTA) assay using the (h) ERα-HeLa-9903 cell line, derived from a human cervical tumor, and the BG1Luc ER TA assay using the BG1Luc-4E2 cell line, derived from a human ovarian adenocarcinoma. The cell lines used in these assays express ER and have been stably transfected with an ER responsive luciferase reporter gene. The assays are used to identify chemicals that activate (i.e. act as agonists) and also suppress (i.e. act as antagonists) ER- dependent transcription. ER are activated following ligand binding, after which the receptor-ligand complex binds to specific DNA response elements and transactivates the reporter gene, resulting in increased cellular expression of a marker enzyme (e.g. luciferase in luciferase based systems). The enzyme then transforms the substrate to a bioluminescent product that can be quantitatively measured with a luminometer. These test methods are being proposed for screening and prioritisation purposes, but also provide mechanistic information that can be used in a weight of evidence approach.
The in vitro mammalian cell gene mutation test can be used to detect gene mutations induced by chemical substances. This TG includes two distinct in vitro mammalian gene mutation assays requiring two specific tk heterozygous cells lines: L5178Y tk+/-3.7.2C cells for the mouse lymphoma assay (MLA) and TK6 tk+/- cells for the TK6 assay. Genetic events detected using the tk locus include both gene mutations and chromosomal events.
Cells in suspension or monolayer culture are exposed to, at least four analysable concentrations of the test substance, both with and without metabolic activation, for a suitable period of time. They are subcultured to determine cytotoxicity and to allow phenotypic expression prior to mutant selection. Cytotoxicity is usually determined by measuring the relative cloning efficiency (survival) or relative total growth of the cultures after the treatment period. The treated cultures are maintained in growth medium for a sufficient period of time, characteristic of each selected locus and cell type, to allow near-optimal phenotypic expression of induced mutations. Mutant frequency is determined by seeding known numbers of cells in medium containing the selective agent to detect mutant cells, and in medium without selective agent to determine the cloning efficiency (viability). After a suitable incubation time, colonies are counted.
This test measures structural chromosomal aberrations (both chromosome- and chromatid-type) in dividing spermatogonial germ cells and is, therefore, expected to be predictive of induction of heritable mutations in these germ cells. The purpose of the in vivo mammalian spermatogonial chromosomal aberration test is to identify those chemicals that cause structural chromosomal aberrations in mammalian spermatogonial cells (1) (2) (3). In addition, this test is relevant to assessing genetoxicity because, although they may vary among species, factors of in vivo metabolism, pharmacokinetics and DNA-repair processes are active and contribute to the response.
The original Test Guideline 483 was adopted in 1997. This modified version of the Test Guideline reflects many years of experience with this assay and the potential for integrating or combining this test with other toxicity or genotoxicity studies.
La présente ligne directrice décrit les effets d'un produit chimique d’essai sur le fonctionnement de la reproduction chez le mâle et la femelle. Elle a été mise à jour par l'ajout de paramètres relatifs à la détection des perturbateurs endocriniens, en particulier la mesure de la distance ano-génitale et l’examen de la persistance du mamelon chez les petits, ainsi qu'un examen thyroïdien.
La substance d’essai est administrée par doses graduées à plusieurs groupes de mâles et de femelles. Les mâles doivent être traités pendant au moins quatre semaines ; les femelles doivent être traitées tout au long de l’étude (approximativement 63 jours). Normalement des accouplements « un mâle pour une femelle » doivent être employés dans cette étude. Cette Ligne directrice utilise le rat. Il est recommandé que la substance d’essai soit administrée oralement par gavage. Ceci devrait être fait avec une dose unique quotidienne en utilisant une sonde gastrique ou une canule d'intubation appropriée. Chaque groupe devrait initialement inclure au moins 10 animaux de chaque sexe. Généralement, au moins trois groupes d'essai et un groupe de contrôle devraient être employés. Des niveaux de dose devraient être choisis, en tenant compte de toutes données de toxicité existantes et de (toxico-) cinétique disponibles. Les résultats de cette étude incluent des observations cliniques, la mesure du poids corporel et la consommation de nourriture/eau, la surveillance du cycle œstral, la mesure/observation des caractéristiques de la descendance, un examen hématologique et de biochimie clinique, de même qu’une autopsie générale et l'histopathologie. Les résultats de cette étude de toxicité devraient être évalués en termes d'effets observés, autopsie et résultats microscopiques. L'évaluation inclura le rapport entre la dose de la substance d'essai et la présence ou l'absence d’observations. En raison de la période courte du traitement du mâle, l'histopathologie du testicule et l'épididyme doivent être pris en compte avec les données de fertilité, lors de l’évaluation des effets reproducteurs mâles.
This method provides information on health hazard likely to arise from exposure to liquid or solid test substance by dermal application. This Test Guideline recommends sequential testing strategies, which include the performance of validated and accepted in vitro or ex vivo tests for corrosion/irritation.
The albino rabbit is the preferable laboratory animal. The substance to be tested is applied in a single dose to a small area of skin (approximately 6cm²) of an experimental animal; untreated skin areas of the test animal serve as the control. The exposure period is 4 hours. Residual test substance should then be removed. The dose is 0.5ml (liquid) or 0.5g (solid) applied to the test site. The method consists of two tests: the initial test and the confirmatory test (used only if a corrosive effect is not observed in the initial test). All animals should be examined for signs of erythema and oedema during 14 days. The dermal irritation scores should be evaluated in conjunction with the nature and severity of lesions, and their reversibility or lack of reversibility. When responses persist to the end of the 14-day observation period, the test substance should be considered an irritant.